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1. 大鼠一般操作技术
2. 小鼠的基本实验操作
3. 动物疫病实验室操作常识

1、大鼠一般操作技术

大鼠固定 将大鼠固定好，将尾巴拉直，绷紧。在进行尾静脉注射时，可使用特殊的固定装置进行固定，如尾静脉注射架或粗的矿泉水瓶。

取一棕色广口瓶，置一些棉球于其中。在进行气管注入前倒入其中一些乙醚，注意加盖。 抓起老鼠将头塞入瓶口内几秒钟。

验证和测序：从电泳分离的PCR产物中切割目标带进行测序验证。测序可以通过Sanger测序或高通量测序技术进行。这一步可以得到目标基因外显子的具体序列信息。

、小鼠的基本实验操作 实验目的：通过实际操作，掌握大、小鼠的一般操作方法，包括大、小鼠的抓取和固定、性别鉴定、给药、采血。

合适的大小选择：根据大鼠的体重选择合适的灌胃针和插管，通常250克以下的大鼠采用6#灌胃针，250克至300克的大鼠采用8#灌胃针，300克以上的大鼠可以采用更大型号的灌胃针。

2、小鼠的基本实验操作

实验目的： 通过实际操作，掌握小鼠的一般操作方法，包括小鼠的抓拿、标记、给药（灌胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射）、取血（眶后静脉丛，摘眼球）、脊椎脱臼法处死、大体解剖。

成像操作：根据所选的活体成像技术，将标记后的小鼠放置在成像设备中进行成像。在成像过程中，需要注意控制环境因素，如温度、湿度等，以保证成像质量和动物福利。

一次性帽子，衣服，手套，保护手套、口罩、一次性桌布、液氮1罐。泡沫板7个、A4纸若干、酒精棉球一袋、75％乙醇10瓶、500ml烧杯、小镊子和小剪刀10副。

几种常用实验动物的染毒途径的操作方法 小鼠 1．灌胃法 左手拇指和食指捏住小鼠颈背部皮肤，无名指和小指将尾部紧压在手掌上，使小鼠腹部朝上。

3、动物疫病实验室操作常识

实验动物设施周围应无传染源，不得饲养非实验用家畜家禽，防止昆虫及野生动物侵入。（3）坚持平时卫生消毒制度，降低环境设施中的病原体含量。（4）不从疫区引进实验动物。（5）各类动物应分室饲养，以防交叉感染。

三）在封锁期间，禁止染疫、疑似染疫和易感染的动物、动物产品流出疫区，禁止非疫区的易感染动物进入疫区，并根据扑灭动物疫病的需要对出入疫区的人员、运输工具及有关物品采取消毒和其他限制性措施。

只能依靠实验室监测确诊。2018年8月3日我国确诊首例非洲猪瘟疫情。

三是推进动物标识及疫病可追溯体系建设，建立健全科学防控动物疫病的追溯体系，重点加强规模养殖场标识及追溯体系建设；四是加强动物卫生监督执法工作，建立健全科学防控动物疫病的监督执法体系。

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