大家好，今天小编关注到一个比较有意思的话题，就是关于血清代谢组学需要多少体积的问题，于是小编就整理了4个相关介绍血清代谢组学需要多少体积的解答，让我们一起看看吧。

1. 10%的细胞培养液加多少血清, 不同浓度的培养液加多少血清。1
2. 做代谢组学检测的血液样本怎么采集与前处理
3. 代谢组学细胞样本收集
4. 血清代谢组学研究、

1、10%的细胞培养液加多少血清, 不同浓度的培养液加多少血清。1

一般我们是加体积分数为10%的血清，比如你10mL培养液里边就要含有1mL血清；如果是 胎牛血清 可以用8%。加入不想让细胞长得太快，可以再降低血清的浓度。

在细胞培养中小鼠细胞原代培养加入的胎牛血清比例一般在5%～20%（最常见为10%）。具体到不同试验，应依据文献报导，或细胞类型或基础培养基的成分来确定最佳浓度。

每种细胞的要求不一样，你要看细胞需要是10%还是5%还有的是15%，并不是多益善.。 一般常用的是10％，如果希望细胞长得快点可以用15％，但血清这东西，可以让细胞长得快，同时也可以让细胞分化得快，即加速细胞老化。

%-15%（常见为10%）的DMSO或甘油，含10%-20%血清的冻存培养液。

2、做代谢组学检测的血液样本怎么采集与前处理

基于超高效液相色谱-质谱联用技术的非靶向代谢组学分析流程一般包括： 样品的收集和预处理、代谢物提取、LC-MS全扫描检测、数据预处理、统计分析及差异物结构鉴定。

代谢组学的研究方法：代谢组学研究一般包括代谢组数据的采集、数据预处理、多变量数据分析、标记物识别和途径分析等步骤。生物样品（如尿液、血液、组织、细胞和培养液等）采集后进行生物反应灭活、预处理。

代谢物提取，一般要求每组至少10个样； 在所有提取好的样本中取等量混合作为QC； QC样本与实验样本穿插上机，开始十个QC，结尾三个QC，中间每十个样本穿插一个QC样本 。

根据样本或分组内缺失值的比例，进行数据过滤是代谢组学分析中常用的方法。缺失值填充 对于未被过滤的缺失值，如果直接忽视，这样的数据矩阵可能会影响后续算法的计算，将会触发异常。

红外（IR）光谱：通过IR光谱分析，可以获得代谢物中功能团的信息。以上方法可以单独使用，也可以结合使用。

3、代谢组学细胞样本收集

代谢组学方法已广泛用于动物和植物组织、酵母和细菌，针对不同的组织和细胞类型开发了不同的样品收集技术。

离心：将血液样本在4°C下进行离心（例如，3000 g，10分钟），以分离血浆或血清。血浆：抽血后，立即在4°C下离心（例如，3000 g，10分钟）以分离血浆。血浆位于管子顶部，应小心转移以避免扰动红细胞。

代谢组学的研究方法：代谢组学研究一般包括代谢组数据的采集、数据预处理、多变量数据分析、标记物识别和途径分析等步骤。生物样品（如尿液、血液、组织、细胞和培养液等）采集后进行生物反应灭活、预处理。

收集细胞没收集完全细胞会导致细胞破碎从而影响代谢组学分析过程。细胞不同于其他的样本，它的代谢物丰富但含量较低且不易收集或收集不完全，因此需要一种有效可靠的处理方法来获得更为全面的代谢物信息。

4、血清代谢组学研究、

理论来说，血清做代谢组学效果会更好，血清中代谢物的含量略高于血浆。腹主动脉取出的血较多，因此血清或血浆样品均可以作为代谢组学样品进行分析。

血清和血浆样本都被广泛用于代谢组学研究，整体而言，血清和血浆的代谢物种类差异不大，但是多数代谢物在两种样本中浓度差异较大。只要确保样本收集过程的一致性。

离心：将血液样本在4°C下进行离心（例如，3000 g，10分钟），以分离血浆或血清。血浆：抽血后，立即在4°C下离心（例如，3000 g，10分钟）以分离血浆。血浆位于管子顶部，应小心转移以避免扰动红细胞。

公司介绍：苏州帕诺米克（BioNovoGene）最早是做基因检测服务的，2017左右聚焦做代谢组学，改名为诺米代谢（PanoMIX），公司2021年获得元生创投亿级融资。

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