构建载体大肠杆菌不长-大肠杆菌载体主要有以下几类
大家好,今天小编关注到一个比较有意思的话题,就是关于构建载体大肠杆菌不长的问题,于是小编就整理了5个相关介绍构建载体大肠杆菌不长的解答,让我们一起看看吧。
1、用lb培养基划线大肠杆菌菌液不长是为什么
多半是:挑的菌有问题。可能没挑到,也可能挑的菌没有对抗生素的抗性,或者挑的是杂菌。培养基,一般不会出现问题。除非是同批次的都很清澈。
其次,芽孢杆菌酵母放线菌等在LB中也能生长,你的平板没有菌落的话可能与土壤样品有关。
培养基方面主要灭菌,而且加过氨苄的培养基不要放置过长时间最好不要放置超过一周。操作环境方面主要确保无菌操作。
是否菌液中抗生素浓度加的过高?2 是否培养时间不够?(因为我们培养常常要超过20个小时,在高浓度抗生素平板上长出菌不容易啊!)3 是否导入质粒失败?也可能跟你转化的质粒有关。
菌液是否足够,如果是转化的菌,质粒浓度是否足够,感受态是否制备无误。 涂布器是不是烧过之后直接接触了菌液。
2、质粒转化大肠杆菌不长菌怎么回事
转化效率太低:在转化时,可以设立阳性对照,判断转化实验是否正常。要是阳性对照也长不出菌落,证明转化实验没有成功。
第一个不是问题,PCR保温就是为了保护DNA不被破坏。第二个是问题,和我以前遇到的情况很相似,我做的是RbCl2的EPI300感受态,当时没放冰水混合物冰浴,直接丢到-20C冰箱,结果结冰,导致转化率大幅下降。
可能存在两个问题,1,没有染菌,但出现发酵过程中质粒丢失。不知道你在上罐的时候是否加压?可以试一下。2,存在染菌,上罐就出现这种情况,可能是培养基没有灭彻底,或者是发酵罐中存在灭菌死角,还有就是空气过滤系统。
可能是转化效率低吧,或者虽然质粒转进去了,但生产的缺陷蛋白不能满足宿主细胞生长的需要,就长得慢了。
菌液是否足够,如果是转化的菌,质粒浓度是否足够,感受态是否制备无误。 涂布器是不是烧过之后直接接触了菌液。
3、为什么培养基培养了一周都没有菌落长出呢?
样本本身无菌。培养基过期失效。培养箱故障。实验器皿未清洗彻底,残留抑菌成分。培养时间不足。
因为划平板时细菌(或其他微生物)是接种在培养基表面的,自然先在表面生长,等表面的培养基消耗了,就会往下生长,不一定是由于表面有空气,因为微生物也有厌氧型的。
可能是温度不够,或是时间太短,水分不足。现在干燥低气温下食物放一天也不会坏。
物体表面微生物监测没有培养出菌落的原因可能有以下几种情况: 低生物负荷:物体表面上的微生物数量非常少,无法在培养基上生长形成可见的菌落。这可能是由于物体表面清洁程度高,或者物体受到了抗菌处理,如常见的消毒操作。
4、为什么用大肠杆菌涂板时老不长菌?
可能的原因有很多啊,比如说抗生素加错了,涂板出问题了,培养条件不适宜等等。
虽然可能性不大,但是还是有这个可能,就是你同学说的:感染了噬菌体。感染噬菌体后会形成噬菌斑。不是感染了噬菌斑,呵呵。
可能原因: 感受态效率低 培养基抗生素加的不对或者量加错。涂平板时涂布棒没有充分冷却。连接效率低。
可能原因有很多,需要现场具体情况具体分析。例如,菌液中的细菌已经死亡,操作不当,培养条件不对,培养基质量问题等等。大肠杆菌的营养要求实际上并不高,使用普通营养条件的培养基,就可以比较容易地将其培养出来。
5、载体的构建转大肠不长斑是什么情况
大片段载体构建时的大肠杆菌形成是不是慢 DNA片段的克隆需要合适的载体,载体或是质粒,或是噬菌体,或是病毒,通常大多经过人工改造[地的。
构建载体时,转化过后不长菌的原因:转化的时候有误,可以重新实验。
色斑的成因包括外部和内部因素。外部因素有阳光紫外线、环境污染、过度使用化妆品和电器辐射等;内部因素则包括生活和工作压力、情绪波动、内分泌失调和代谢问题等。
第一个不是问题,PCR保温就是为了保护DNA不被破坏。第二个是问题,和我以前遇到的情况很相似,我做的是RbCl2的EPI300感受态,当时没放冰水混合物冰浴,直接丢到-20C冰箱,结果结冰,导致转化率大幅下降。
大肠杆菌为原核生物,原核生物的基因序列中不含有内含子,也就没有内含子的剪切机制,而真核生物中获得的完整的基因片段中一定是含有内含子的,(mRNA中不含)所以,在表达上会有差异。
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